細胞自噬研究策略

醫(yī)學(xué)科研實驗基礎(chǔ)知識筆記(四):細胞自噬研究策略

細胞自噬是指細胞在外界環(huán)境因素的影響下, 細胞利用溶酶體降解自身受損、 變性或衰老的大分子物質(zhì)以及細胞器的自我消化過程。自噬是細胞的一種自我保護機制, 廣泛存在于真核細胞內(nèi), 在調(diào)節(jié)細胞生存和死亡的過程中, 起著重要的作用。

當(dāng)細胞發(fā)生自噬后, 在自噬相關(guān)基因的調(diào)節(jié)下, 細胞通過單層或雙層膜, 包裹待降解的細胞質(zhì)或細胞器, 形成囊泡狀的自噬體(autophagosome) 。然后自噬體再和溶酶體(lysosome)

發(fā)生融合形成自噬溶酶體(autolysosome) , 由溶酶體內(nèi)的一系列水解酶, 降解自噬溶酶體內(nèi)所包裹的內(nèi)容物, 以實現(xiàn)細胞對自身代謝和能量的更新。

1.自噬的細胞學(xué)分類及過程

根據(jù)細胞內(nèi)物質(zhì)運輸?shù)饺苊阁w的方式以及生理功能的差異, 哺乳動物的細胞自噬可以分為三種類型:大自噬/宏自噬(macroautophagy) , 小自噬/微自噬(microautophagy) 和分子伴侶介導(dǎo)的自噬(chaperone-mediated autophagy, CMA) 。

1) 大自噬/宏自噬:我們通常所說的自噬指的就是大自噬/宏自噬。在大自噬的過程中, 細胞質(zhì)中可溶性的大分子物質(zhì)以及變性的細胞器, 被內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、 線粒體來源的單層或雙層膜包裹形成自噬體。接著自噬體的外膜與溶酶體膜融合, 進一步形成自噬溶酶體, 自噬體內(nèi)的待降解物被一系列的水解酶降解, 最終完成整個的自噬過程。

2) 小自噬/微自噬:與大自噬過程不同, 是溶酶體膜自身發(fā)生內(nèi)陷, 包裹和吞噬細胞內(nèi)待降解的底物, 并在溶酶體內(nèi)發(fā)生降解。小自噬與大自噬的區(qū)別就在于, 在小自噬過程中胞質(zhì)成份是直接被溶酶體包裹, 沒有形成自噬體的過程。

3) 分子伴侶介導(dǎo)的自噬:在分子伴侶介導(dǎo)發(fā)生的自噬過程中, 其待降解的底物都是可溶性的蛋白質(zhì)分子。分子伴侶蛋白識別帶有特定氨基酸序列的底物蛋白質(zhì)分子, 并與之結(jié)合, 然后再經(jīng)溶酶體膜上的受體 Lamp2a(lysosome-associated membrane protein 2, Lamp2) 轉(zhuǎn)運到溶酶體;底物蛋白分子再在溶酶體內(nèi), 被水解酶降解。因此, 分子伴侶介導(dǎo)的自噬與前兩者不同, 在降解蛋白時具有選擇性。而大自噬和小自噬現(xiàn)象中, 一般而言, 在降解蛋白時沒有明顯的選擇性。

2.自噬信號通路

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3.自噬與凋亡的關(guān)系

細胞凋亡也被稱為 I 型程序性細胞死亡;自噬則被稱為 II 型程序性細胞死亡。凋亡和自噬是兩種顯著不同的細胞死亡形式, 兩者在形態(tài)、 生化指標(biāo)以及調(diào)控細胞死亡的過程上都存在著較大的差異, 但兩者又不是兩個完全獨立的過程。許多研究表明, 凋亡和自噬的作用以及功能在某些情況下也是相互影響和制約的。自噬和凋亡之間存在著三種不同類型的相互作用,而且每種類型都對應(yīng)著相應(yīng)的特定的細胞類型、 刺激和環(huán)境。

1) 自噬和凋亡互相協(xié)同, 共同促進細胞死亡。兩種效應(yīng)之間, 可以其中一種效應(yīng)影響另一種效應(yīng);自噬也可以作為凋亡的上游調(diào)節(jié)因子, 直接調(diào)控細胞凋亡, 從而影響細胞的死亡;

2) 自噬可以通過促進細胞存活而拮抗細胞的凋亡效應(yīng)。比如, 可以通過去除因氧化應(yīng)激受損的細胞器, 或降解變性的大分子物質(zhì), 為饑餓的細胞提供生存所需要的營養(yǎng)和能量;或者通過降解未折疊的蛋白來抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激。自噬的這些功能將會抑制促凋亡信號的產(chǎn)生, 從而起到拮抗細胞凋亡的作用。

3) 自噬有時雖然自身并沒有導(dǎo)致細胞死亡, 但卻參與了細胞凋亡的過程。比如自噬參與了一些 ATP 依賴的凋亡過程。

4.自噬的分子機制和特征

1) 自噬誘導(dǎo)階段(induction) :正常生理狀態(tài)下, 細胞保持很低的基礎(chǔ)自噬水平。這時細胞內(nèi)能量充足,哺乳動物雷帕霉素靶蛋白復(fù)合物 1(也就是 mTOR 復(fù)合物 1,也叫做 mTORC1)處于活化的狀態(tài)。活化的 mTORC1 通過磷酸化的方式使得 ATG13 發(fā)生磷酸化反應(yīng), 從而抑制細胞的自噬。

2) 成核過程(vesicle nucleation) :成核過程和 Vps34-ATG6 復(fù)合物密切相關(guān)。這個復(fù)合物還包含有調(diào)節(jié)性蛋白激酶 Vps15, 共同作用于膜泡的成核, 介導(dǎo) PAS(也就是前自噬體結(jié)構(gòu)pre-autophagosomal structure)的形成。

Vps34-ATG6 復(fù)合體還可以召集 ATG12-ATG5 和 ATG16 多聚體以及 LC3, 并通過后兩者促進吞噬泡的伸展擴張。請大家注意, Vps34 在哺乳動物中的同源蛋白是 class III PI3K;ATG6在哺乳動物中的同源蛋白是 Beclin-1, 所以 Vps34-ATG6 復(fù)合體, 也被稱為 PI3K-Beclin-1復(fù)合物。

3) 自噬體的延伸階段:這個過程的分子機制是最為復(fù)雜的。哺乳動物自噬體的延伸主要依賴于兩個類泛素化的系統(tǒng):a) ATG12 的結(jié)合過程;b) LC3 的修飾過程。

ATG12 的結(jié)合過程是類似泛素化的過程, 需泛素活化酶 E1 和 E2 的參與。ATG12 首先由 E1樣酶 ATG7 活化, 再通過 E2 樣酶 ATG10 轉(zhuǎn)運并結(jié)合 ATG5, 然后和 ATG16 結(jié)合, 生成ATG12-ATG5-ATG16 的多體復(fù)合物。這個復(fù)合物定位于前自噬體結(jié)構(gòu)的外膜表面, 并參與前自噬體外膜的擴張。

LC3 在酵母中的同源基因是 ATG8。LC3 的修飾過程同樣需要類似泛素活化酶 E1 和 E2 的參與。LC3 前體形成后被 ATG4 加工成胞漿可溶性的 LC3-Ⅰ, 然后在 E1 樣酶 ATG7 和 E2樣酶 ATG3 的作用下, 和磷脂酰乙醇胺(PE)共價連接成為脂溶性的 LC3-PE(也就是 LC3-II),并參與膜的延伸。LC3-Ⅱ能夠與新形成的膜結(jié)合, 直到自噬溶酶體(Autolysosome)的形成。因此, LC3-Ⅱ常用作自噬形成的標(biāo)識物, 也是一種重要的定位于自噬泡膜上的多信號傳導(dǎo)調(diào)節(jié)蛋白。

哺乳動物的 ATG12-ATG5 類泛素化過程和 LC3 類泛素化過程并不是獨立運行的, 它們之間可以相互作用、 相互調(diào)節(jié)。

4) 自噬體的成熟階段:自噬體的成熟主要是指自噬體通過微管骨架在轉(zhuǎn)運必須內(nèi)吞體分類復(fù)合物(ESCRT)和單體 GTP 酶(Rab S)作用下, 與溶酶體融合形成自噬溶酶體的過程。參與成熟階段的溶酶體相關(guān)蛋白還包括:LAMP1、 LAMP2、 UVRAG(紫外線抵抗相關(guān)腫瘤抑制基因)。

5) 自噬體的裂解階段:是指自噬溶酶體膜的裂解及內(nèi)容物在溶酶體水解酶的作用下降解的過程。降解過程中產(chǎn)生的氨基酸及部分蛋白可以為細胞提供營養(yǎng)、 能量或循環(huán)利用。

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5.自噬誘導(dǎo)劑

a) Bredeldin A / Thapsigargin / Tunicamycin :模擬內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激

b) Carbamazepine/ L-690,330/ Lithium Chloride(氯化鋰):IMPase 抑制劑(即Inositol monophosphatase,肌醇單磷酸酶)

c) Earle's平衡鹽溶液:制造饑餓

d) N-Acetyl-D-sphingosine(C2-ceramide):Class I PI3K Pathway抑制劑

e) Rapamycin:mTOR抑制劑

f) Xestospongin B/C:IP3R阻滯劑

6.自噬抑制劑

a) 3-Methyladenine(3-MA):(Class III PI3K) hVps34 抑制劑

b) Bafilomycin A1:質(zhì)子泵抑制劑

c) Hydroxychloroquine(羥氯喹)

除了選用上述工具藥外,一般還需結(jié)合遺傳學(xué)技術(shù)對自噬相關(guān)基因進行干預(yù):包括反義RNA干擾技術(shù)(Knockdown)、突變株篩選、外源基因?qū)氲取?/p>

7.自噬的檢測手段

自噬的評估通常采用多個自噬階段的標(biāo)志物,因為自噬小體數(shù)量的增加可能是自噬上調(diào)也可能是自噬最后階段降解被抑制所致,所以設(shè)置合適的對照很有必要。

(1)透射電鏡,電鏡觀察自噬體和溶酶體的超微結(jié)構(gòu);

(2)WB檢測標(biāo)志物L(fēng)C3/Atg8和p62/SQSTM1;生化檢測自噬體膜標(biāo)志蛋白, 特別是ATG12、 ATG5 和 LC3;熒光顯微鏡檢測 LC3 或GFP-LC3 斑點的形成;生化檢測自噬底物 p62。

(3)WB檢測Lamps、Atg5、Atg14和Beclin-1。

(4)組織蛋白酶Cathepsin活力檢測。

(5)IF檢測自噬潮autophagic flux

自噬過程進行觀察和檢測 細胞經(jīng)誘導(dǎo)或抑制后,需對自噬過程進行觀察和檢測,常用的策略和技術(shù)有:

(1)觀察自噬體的形成

由于自噬體屬于亞細胞結(jié)構(gòu),普通光鏡下看不到,因此,直接觀察自噬體需在透射電鏡下。Phagophore的特征為:新月狀或杯狀,雙層或多層膜,有包繞胞漿成分的趨勢。自噬體(AV1)的特征為:雙層或多層膜的液泡狀結(jié)構(gòu),內(nèi)含胞漿成分,如線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、核糖體等。自噬溶酶體(AV2)的特征為:單層膜,胞漿成分已降解。(autophagic vacuole,AV)

(2)在熒光顯微鏡下采用GFP-LC3融合蛋白來示蹤自噬形成

由于電鏡耗時長,不利于監(jiān)測(Monitoring)自噬形成,人們利用LC3在自噬形成過程中發(fā)生聚集的現(xiàn)象開發(fā)出了此技術(shù)。無自噬時,GFP-LC3融合蛋白彌散在胞漿中;自噬形成時,GFP-LC3融合蛋白轉(zhuǎn)位至自噬體膜,在熒光顯微鏡下形成多個明亮的綠色熒光斑點,一個斑點相當(dāng)于一個自噬體,可以通過計數(shù)來評價自噬活性的高低。

(3)利用Western Blot檢測LC3-II/I比值的變化以評價自噬形成自噬形成時,胞漿型LC3(即LC3-I)會酶解掉一小段多肽,轉(zhuǎn)變?yōu)椋ㄗ允审w)膜型(即LC3-II),因此,LC3-II/I比值的大小可估計自噬水平的高低。

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(注意:LC3抗體對LC3-II有更高的親和力,會造成假陽性。需要多種檢測方法結(jié)合使用,同時需考慮溶酶體活性的影響。)

(4)檢測長壽蛋白的批量降解:非特異

(5)MDC(Monodansylcadaverine,單丹磺酰尸胺)染色:包括自噬體,所有酸性液泡都被染色,故屬于非特異性的。

(6)CellTrackerTM Green染色:主要用于雙染色,但其能染所有的液泡,故也屬于非特異性的。

自噬相關(guān)蛋白的定位 在研究自噬相關(guān)蛋白時,需對其進行定位。

由于自噬體與溶酶體、線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體關(guān)系密切,為了區(qū)別,常用到一些示蹤蛋白在熒光顯微鏡下來共定位:

Lamp-2:溶酶體膜蛋白,可用于監(jiān)測自噬體與溶酶體融合。

LysoTrackerTM 探針:有紅或藍色可選,顯示所有酸性液泡。

pDsRed2-mito:載體,轉(zhuǎn)染后表達一個融合蛋白(紅色熒光蛋白+線粒體基質(zhì)定位信號),可用來檢測線粒體被自噬掉的程度(Mitophagy)。

MitoTraker探針:特異性顯示活的線粒體,熒光在經(jīng)過固定后還能保留。

Hsp60:定位與線粒體基質(zhì),細胞死亡時不會被釋放。

Calreticulin(鈣網(wǎng)織蛋白):內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腔

(注意:這些蛋白均為胞漿蛋白,爬片或胰酶消化的細胞在做免疫熒光前需先透膜(permeablize),可采用0.1%SDS處理。)

8.自噬研究常規(guī)思路

通常情況下,除了研究自噬現(xiàn)象本身,大家更多的是將自噬與各種生命活動或者疾病結(jié)合起來,把自噬作為這些方向的一個機制來研究。比如研究自噬如何參與腫瘤的發(fā)生發(fā)展、如何參與腫瘤的耐藥性與復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移、如何參與腫瘤免疫治療的效果、如何參與炎癥反應(yīng)、如何參與氧化應(yīng)激,如何參與自閉癥、阿爾茲海默癥的發(fā)生與治療等,通常的研究模式:

(1)證明自噬參與了相關(guān)研究表型(電鏡、LC3II/I-WB、LC3亞細胞定位、LC3熒光示蹤監(jiān)測自噬流等)

(2)證明自噬在表型中起到關(guān)鍵作用(通過自噬抑制劑、激動劑進行關(guān)聯(lián)研究)找到表型與自噬橋梁分子(檢測pI3K通路、Beclin-1、ATG家族各成員)

(3)在基因?qū)用嫱ㄟ^gain of/lost of function研究橋梁分子在自噬中的作用。

9.研究自噬的文獻參考

[1]. Emerging Mechanisms in Initiating and Terminating Autophagy. Trends Biochem Sci. 2017 Jan;42(1):28-41.

[2]. Targeting autophagy in cancer. Nat Rev Cancer. 2017 Sep;17(9):528-542.

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[7]. Epigenetic Control of Autophagy: Nuclear Events Gain More Attention. Mol Cell.2017 Mar 2;65(5):781-785.

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