2020-12-17水稻、小麥GO富集分析

RNAseq常規(guī)做法是先篩選出差異表達基因,然后針對篩選出來的差異基因做GO富集分析。

1.水稻、小麥GO信息提取

在進行GO富集分析前首先要確定在你所使用的GO富集分析軟件(包)中你所研究的物種有沒有相應(yīng)Gene與GO對應(yīng)關(guān)系。如果沒有,則需要自己根據(jù)該物種功能注釋文件去提取Gene與GO對應(yīng)關(guān)系。當(dāng)然如果你對一些新組裝出來的基因感興趣,也可以通過跑blast2go等電子注釋方法獲取Gene對應(yīng)GO信息。

## 方法一:從功能注釋文件中提取。
##1.水稻(wget下載):wget https://rapdb.dna.affrc.go.jp/download/archive/irgsp1/IRGSP-1.0_representative_annotation_2020-12-02.tsv.gz
setwd("/Users/mac/Desktop/項目/rice")
library(tidyr)
library(stringr)
#Note:提取注釋文件中的GO-GENE
Func_Anno<-read.table("IRGSP-1.0_representative_annotation_2020-12-02.tsv",sep="\t",quote = "",header=TRUE,fill=TRUE)
GO_Gene<-Func_Anno[,c(2,10)]
  #去掉空值行(基因?qū)?yīng)GO id為空)
GO_Gene<-GO_Gene[-which(GO_Gene$GO==""),]
  #拆分第二列數(shù)據(jù)(Note:一個逗號一個GO)
GO_Sep<-separate(GO_Gene,col=GO,sep =',',remove = TRUE,into=as.character(c(1:50)))
    #檢查GO是否完全分開
which(!is.na(GO_Sep[,51]))         #判斷最后一列是否有非NA值
sum(is.na(GO_Sep[,51]))            #判斷最后一列為NA值行數(shù)是否與矩陣行一樣
    #刪除全為NA的列
GO_Sep<-GO_Sep[,-which(apply(GO_Sep,2,function(x) all(is.na(x))))]
  #按行合并
GO_Gene_Matr<-data.frame(matrix(NA,300000,2))
for(i in 2:ncol(GO_Sep)){
  if(i==2){
    tmp<-as.matrix(GO_Sep[,c(1,i)])
    GO_Gene_Matr<-tmp
  }else{
    tmp<-as.matrix(GO_Sep[,c(1,i)])
    GO_Gene_Matr<-rbind(GO_Gene_Matr,tmp)
  }
}
  #取出含GO的行
GO_Gene_Matr<-GO_Gene_Matr[grep("GO:",GO_Gene_Matr[,2]),]
GO<-data.frame(str_sub(GO_Gene_Matr[,2],start=-11L,end=-2L))
GO_Gene_Matr_Final<-cbind(GO_Gene_Matr,GO)
GO_Gene_Matr_Final<-GO_Gene_Matr_Final[,c(1,3)]
GO_Gene_Matr_Final<-unique(GO_Gene_Matr_Final)
colnames(GO_Gene_Matr_Final)<-c("GeneID","GO")
write.table(GO_Gene_Matr_Final,"GO_Gene.txt",col.names = TRUE,row.names = FALSE,quote=FALSE,sep="\t")

##2.小麥(wget下載):wget https://urgi.versailles.inra.fr/download/iwgsc/IWGSC_RefSeq_Annotations/v1.0/iwgsc_refseqv1.0_FunctionalAnnotation_v1.zip
Note:解壓后使用里面的iwgsc_refseqv1.0_FunctionalAnnotation_v1__HCgenes_v1.0.TAB(高可信任基因)
setwd("/Users/mac/Desktop/項目/triticum_aestivum/GO")
library(tidyr)
library(stringr)
#1.提取注釋文件中的GO-GENE-Function
Func_Anno<-read.table("iwgsc_refseqv1.0_FunctionalAnnotation_v1__HCgenes_v1.0.TAB",sep="\t",quote = "",header=TRUE)
GO_Gene<-Func_Anno[,c(1,8)]
  #去掉空值行(基因?qū)?yīng)GO id為空)
GO_Gene<-GO_Gene[-which(GO_Gene$GO.IDs..Description..via.Interpro==""),]
GeneID<-sub('..$','',GO_Gene[,1])
GO_Gene$Gene.ID<-GeneID
  #拆分第二列數(shù)據(jù)
GO_Sep<-separate(GO_Gene,col=GO.IDs..Description..via.Interpro,sep =';',remove = TRUE,into=as.character(c(1:20)))
  #檢查GO是否完全分開(沒有增加前面的into范圍)
which(!is.na(GO_Sep[,21]))         #判斷最后一列是否有非NA值
sum(is.na(GO_Sep[,21]))            #判斷最后一列為NA值行數(shù)是否與矩陣行一樣
GO_Sep_Matr<-data.frame(matrix(NA,300000,2))
k=1
for(i in 1:nrow(GO_Sep)){
  for(j in 2:ncol(GO_Sep)){
    if(is.na(GO_Sep[i,j])==FALSE){
      GO_Sep_Matr[k,1]<-GO_Sep[i,1]
      GO_Sep_Matr[k,2]<-GO_Sep[i,j]
      k=k+1
    }
  }
}
GO_Sep_Matr<-GO_Sep_Matr[-which(apply(GO_Sep_Matr,1,function(x) all(is.na(x)))),]
Extract<-str_split_fixed(GO_Sep_Matr[,2]," ",n=2)
GO_Info<-cbind(GO_Sep_Matr[,1],Extract[,1:2])
  #去重復(fù)
GO_Info<-unique(GO_Info)
colnames(GO_Info)<-c("GeneID","GO","Function")
GO_Gene<-GO_Info[,1:2]
write.table(GO_Gene,"GO_Gene.txt",col.names = TRUE,row.names = FALSE,quote=FALSE,sep="\t")
write.table(GO_Info,"GO_Info.txt",col.names = TRUE,row.names = FALSE,quote=FALSE,sep="\t")
#方法二:從一些數(shù)據(jù)庫中下載背景文件,然后分析。
http://systemsbiology.cau.edu.cn/agriGOv2/download.php

2.GO富集分析

Note:參考TBtools完成。

2.1富集分析

TBtools使用說明

2.2可視化

TBtools使用說明
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